推荐使用条件
储存缓冲液:20 mmol/L Tris-HCl (pH 8.0), 2 mmol/L MgCl2, 20 mmol/L NaCl, 50%(v/v)甘油
最适pH:8.0,pH适用范围:6~10,可用50 mmol/L TRIS-HCL或PBS的缓冲体系
最适温度:37℃,温度适用范围:0~42℃
反应时间:(15~37℃)时,反应时间30~60min;(2~8℃)时,反应时间60min以上(温度越低,需要延长反应时间才能达到效果)
辅助因子:向反应体系加入适量MgCL2,使得Mg2+ 达到 2~10mmol/L,促进反应。
用量:Biolonase核酸酶有效工作浓度为10~100u/ml,首次使用建议50u/ml。
用法:建议在悬浮菌体时加入Biolonase核酸酶,尽早加入可增加反应时间,降低核酸效果越好。
典型应用
- 用于除去产品中的DNA/RNA
中国药典2020版三部对Vero细胞培养疫苗要求外源DNA残留不超过100pg·剂量-1,乙型脑炎灭活疫苗不高于100pg·剂量-1,冻干人用狂犬病疫苗不高于3ng·剂量-1,大肠杆菌及酵母表达的治疗类基因工程重组产品,其残余DNA应不超过10ng·剂量-1,对于CHO细胞表达的重组蛋白制品,DNA残留量不超过100pg·剂量-1。Biolonase核酸酶可以将核酸水解为3~5个碱基对的寡聚核苷酸碎片,这些片断极易被除去或不被检出(同时也不具有大分子DNA所具有的危害),从而使产品核酸含量符合要求。
- 用于降低细胞破碎后的粘度
Biolonase核酸酶可以水解核酸,降低细胞溶解产物的粘度,从而提高蛋白质的产量、改善离心分离效果、使过滤(尤其是超滤)变得容易、增加层析纯化的效率。
- 用于微粒处理过程中改善微粒的纯化过程
核酸很容易粘附在病毒颗粒、包涵体颗粒等细胞生成颗粒的表面,造成这些颗粒的凝聚,使颗粒大小或电荷发生改变而影响分离。Biolonase核酸酶能有效的避免核酸的对纯化影响、提高产量。
- 用于生化分析中样品的制备
在ELISA、色谱分析、双相电泳和足印分析中,用核酸酶处理含有核酸的样品,可以提高分辨率、提高回收率。
应用举例
例1. 降低大肠肝菌裂解液黏度
取大肠杆菌BL21(DE3)7.5g(湿重)悬浮于15ml缓冲液(10 mmol/L Tris-HCl,1 mmol/L EDTA,pH9.0)。加入MgCl2使其终浓度为6 mmol/L。分别取5ml大肠杆菌悬浮液,加入核酸酶使其浓度递增。
加入核酸酶后,悬浮液通过高压匀质器(10000psi),然后立即放入0℃下。在不同的时间间隔,用枪头吸入悬浮液,然后滴下,获得“水滴”效果为判定粘度降低标准。以下为不用酶用量,与粘度降低所需时间对比。
核酸酶使用浓度(U/ml)
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“水滴”效果所用(min)
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0.24
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>60
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2.40
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15
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8.0
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5
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24.0
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1.25
|
例2. 核酸去除
将鲱鱼精子DNA溶于缓冲液(50 mmol/L Tris-HCl,1 mmol/L MgCl2,0.1mg/ml BSA,pH8.0)中,制备成供试液。供试液在不同温度下(0℃、23℃、37℃)用不同浓度的Biolonase核酸酶处理。在不同的时间间隔,取出10μl(最初含有500ng DNA)转移到硝酸纤维素膜上。以用32P标记的鲱鱼精子DNA为探针,进行斑点杂交。标准DNA量从100ng到10pg,用于核酸残留半定量计算。
不同处理时间后剩余可杂交鲱鱼精DNA量(ng)
Biolonase核酸酶浓度
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0h
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4h
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6h
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22h
|
90U/ml
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500
|
0.2
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0.02
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无斑点
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9U/ml
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500
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5
|
2
|
0.3
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Biolonase核酸酶浓度为90U/ml,供试液在不同温育时间下残留DNA量(ng)
孵育温度
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0h
|
4h
|
6h
|
22h
|
30h
|
37℃
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500
|
0.20
|
0.02
|
无斑点
|
无斑点
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23℃
|
500
|
0.5
|
0.100
|
0.01
|
无斑点
|
0℃
|
500
|
1
|
0.500
|
0.05
|
0.01
|
Biolonase核酸酶浓度为90U/ml,供试液在不同温育时间下残留DNA量(ng)
缓冲液
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0h
|
4h
|
6h
|
22h
|
30h
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Tris(23℃)
|
500
|
0.2
|
0.02
|
无斑点
|
无斑点
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PBS(23℃)
|
500
|
0.5
|
0.1
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0.01
|
无斑点
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